-2 تشخيص أمراض النبات البكتيرية  من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص المرض وذلك لتشابه األعراض

Download Report

Transcript -2 تشخيص أمراض النبات البكتيرية  من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص المرض وذلك لتشابه األعراض

Slide 1

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 2

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 3

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 4

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 5

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 6

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 7

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 8

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 9

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 10

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 11

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 12

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 13

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 14

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 15

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 16

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 17

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 18

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 19

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 20

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬


Slide 21

‫‪ -2‬تشخيص أمراض النبات البكتيرية‬
‫‪ ‬من الثابت أنه ال يمكن االعتماد على األعراض الظاهرية كوسيلة لتشخيص‬
‫المرض وذلك لتشابه األعراض ‪ .‬فعلى سبيل المثال تتشابه أعراض العفن‬
‫الطري البكتيري والعفن الطري الفطري ‪ .‬وتتشابه التدرنات البكتيرية‬
‫‪ Bacterial Galls‬والحشرية ‪. Insect Galls‬‬

‫‪ ‬ومن ناحية أخرى نجد أن العفن الطري البكتيري قد تسببه أجناس من‬
‫البكتيريا ‪ Erwinia‬أو من البكتيريا ‪ . Pseudomonas‬وهناك‬
‫العديد من األمثلة تؤكد أنه ال يمكن االعتماد على األعراض بمفردها لتعريف‬
‫ل العديد من لفحات الفاصوليا وتبقعات األوراق والثمار فى‬
‫المرض فمث اً‬
‫الطماطم والتخطيط في قصب السكر والذرة والسورجم كلها تحتاج إلى عزل‬
‫ثم تعريف المسبب حتى يصبح التشخيص سليمًا ‪.‬‬

‫كذلك يجب معرفة الهدف الرئيسي من التشخيص حيث تتداخل عوامل الوقت‬
‫ل هناك تشخيص سريع هدفه إعطاء توصية‬
‫والجهد والتكاليف في الهدف فمث اً‬
‫للمزارع أو البستاني للمكافحة "وهو تشخيص إفتراضى ” ‪ .‬وقد يكون‬
‫المطلوب هو تحديد المسبب بدقة وهذا يحتاج إلى جهد وتكاليف أكبر وعادة‬
‫ما تحتاج معظم الحاالت إلى التشخيص السريع وقليل منها يحتاج إلى عزل‬
‫وتنقية‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫‪ 1-2‬األعراض وجمع العينات‬
‫‪‬‬

‫يعتمد التشخيص السليم للمرض فى البداية على التسجيل الدقيق لألعراض‬
‫المرضية وأيضًا التعريف السليم للعائل وهناك العديد من المراجع العلمية‬
‫الفوتوغرافية‬
‫ً‬
‫يمكن االستعانة بها في التعرف على األعراض من الصور‬
‫وأيضًا تفيد العينات المحفوظة ‪ Herbarium‬في ذلك ‪.‬‬

‫‪ ‬من الشائع عدم فحص العينات المصابة مباشرة بعد جمعها من الحقل لذلك‬
‫قد يؤدى طول فترة النقل والتخزين إلى فشل عمليات العزل ‪.‬‬

‫ولتلفى ذلك يجب أن توضع العينات النباتية فور جمعها في أكياس من‬
‫البولى إثيلين ثم توضع األكياس في صندوق حفظ ‪ Ice Box‬به ‪Blue‬‬
‫‪ Ice‬مع تجنب تعريض العينات أو الصندوق للشمس‪ .‬كما يجب تجفيف‬
‫العينات قبل وضعها في األكياس من الماء الزائد‪ .‬ومن الضرورى أن تكون‬
‫العينات ممثلة لألعراض سواء كانت أعراضها على الجذر أو الساق أو‬
‫األوراق أو األزهار أو الثمار ‪ ....‬الخ ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة األمراض التي تصيب الجذور يغسل جزء من العينة لتخليص الجذر‬
‫من األتربة ثم تجفف من المياه والرطوبة الزائدة قبل نقل العينة ًويترك الجزء‬
‫اآلخر بدون إزالة التربة حيث قد يحتاج العزل إلى استخدام التربة الملصقة‬
‫للجذر فى العزل مع ضرورة لف الكيس جيدًا حول الجذر لمنع تساقط‬
‫األتربة من حوله ‪.‬‬

‫‪ ‬من الثابت أن استخدام عينات تمثل األعراض المبكرة لإلصابة أفضل بكثير‬
‫من استخدام عينات تُظهر األعراض المتأخرة وذلك لتسهيل عملية العزل‬
‫ومنع فرصة عزل مسببات أخرى ثانوية ‪.‬‬
‫‪ ‬األعراض المرضية التى تظهر على األوراق والتى تسبب بقع شبه مائية‬
‫‪ Water Soaked‬فى مظهرها أو أعراض شبه شفافة عند تعرضها‬
‫للضوء تكون أفضل فى العزل من العينات ذات المظهر البنى أو المتقرحة‬
‫‪. Necrotic‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فى حالة تبقعات األوراق يجب االحتفاظ ببعض النماذج جافة بعد ضغطها‬
‫بين طبقتين من الورق الخالى من األصباغ أو ورق الترشيح للرجوع إليها‬
‫عند اللزوم كمعشب وأيضًا يمكن العزل منها ‪.‬‬

‫لوحظ أن العديد من البكتيريا الممرضة يمكنها أن تعيش فى األنسجة الجافة‬
‫لمدد تتراوح بين شهر لعدة سنوات ويمكن استخدامها فى العزل م ارت أخرى‬
‫ل معظم البكتيريا من الـجنس ‪ Xanthomonas‬يمكنها المعيشة‬
‫فمث اً‬
‫فى األنسجة الجافة لمدد تزيد عن العام ‪.‬‬

‫‪ 2-2‬الفحصًالميكروسكوبى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫قبل محاولة العزل يجب الفحص الميكروسكوبى لإلصابات البكتي ًرية‬
‫الواضحة ‪.‬‬
‫يمكن التأكد من خروج راشح من إف ارزات لزجة ‪ Oozes‬من العينات‬
‫المصابة عن طريق النظر إلى أسطح األوراق المصابة فيمكن مشاهدة آثار‬
‫طبقة رقيقة المعة وقد يشاهد ذلك أيضًا على أسطح السيقان وعلى البتلت‬

‫إذا ما حضنت األجزاء المصابة وهى مازالت حية لعدة أيام فى وجود رطوبة‬
‫عالية فغالبًا ما تظهر الـ ‪ Oozes‬على التقرحات ‪.‬‬

‫‪ ‬البطاطس الطازجة المصابة بالبكتيريا ‪Pseudomonas‬‬
‫‪ solanacearum‬يجب فحص عيونها أوًالا فقد تخرج منها البكتيريا‬
‫فى صورة ‪ Oozes‬كما يخرج ‪ Ooze‬أيضًا من مدادات الدرنة ‪.‬‬

‫‪ ‬فى حالة تبقعات األوراق والتخطيط يجب قطع حوالى ‪ 4‬مم من الحزم‬
‫الوعائية المجاورة للمنطقة المصابة ثم تحمل فى قطرات من المياه وتفحص‬
‫ميكروسكوبيًا بعد وضعها على شريحة وتغطيتها بـ ‪ Cover‬واستخدام‬
‫الفحص باستخدام ‪Phase‬‬
‫تكبير ‪ X40 ، X100‬ويفضل‬
‫‪Microscopy Contrast‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إذاًكانتًاألنسجةًالنباتيةًطازجةًفإنًالـً‪ Ooze‬سيخرجًمنهاًمباشرةًأماً‬
‫إذاًكانتًمسنةًفسيخرجًببطئًخاصةًعندًحوافًالقطع ‪.‬‬

‫معظمًالبكتيرياًالممرضةًمتحركةًباألسواطًويمكنًمشاهدةًالحركةًفىًالـً‬
‫‪. Oozes‬‬

‫‪ ‬تختلف طبيعة ‪ Oozes‬من مسبب آلخر فالـ ‪ Ooze‬الخارج من‬
‫األنسجة المصابة بـ ‪ Xanthomonas‬أكثر تماسكًا من الناتج عن‬
‫البكتيريا ‪. Pseudomonas‬‬

‫شكل –‪8‬‬
‫تسلسل عزل البكتيريا من االنسجة النباتية المصابة سواء من الورقة أو من ساق نبات مصاب‬

‫شكل –‪9‬‬
‫طريقة سريعة للتعرف على مدى تلوث التربة بالبكتيريا ‪Agrobacterium tumefaciens‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫باستثناء البكتيريا ‪ Agrobacterium‬فإن الـ ‪ Oozes‬تخرج من‬
‫اإلصابات البكتيرية أو تظهر كتل من النموات البكتيرية فى مكان القطع‪.‬‬
‫وعلى الرغم من ذلك فقد تغيب هذه الظاهرة فى بعض الحاالت فيظن البعض‬
‫خطأ عدم وجود إصابة بكتيرية وقد يكون السبب فى ذلك هو تداخل مسبب‬
‫آخر ثانوى مثل الفطريات ويمكن ملحظة ذلك بالفحص الميكروسكوبى أو‬
‫بالعدسات المكبرة ‪.‬‬
‫يجب الدقة التامة عند الفحص الميكروسكوبى حتى ال يختلط األمر‬
‫فيشخص اللبن النباتي ‪ Latex‬أو البلستيدات أو حبيبات النشا على‬
‫أنها خليا بكتيرية فاالختلف بينهم واضح فى الشكل والحجم ًودرجة‬
‫انعكاس الضوء عليهم فى حالة استخدام الـ ‪Phase Contrast‬‬

‫‪.Microscopy‬‬
‫‪‬‬

‫قد تظهر البكتيريا المعزولة من الـ ‪ Oozes‬مختلفة مورفولوجياً عن‬
‫شكلها فى المزرعة الصلبة ‪.‬‬

‫‪ 1-3-2‬طرقًالعزل‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫عند التأكد من وجود الـ ‪ Ooze‬فإن الخطوة التالية هو قطع جزء من‬
‫العينة المصابة باستخدام أدوات تشــريح معقمـة ثم تعلق فى ‪ 3-2‬مم ماء‬
‫معقم أو ‪ Phosphate Buffer‬معقم أو بيئة سائلة معقمة حتى‬
‫تنتشر البكتيريا فى السائل ‪.‬‬
‫تترك العينة لمدة ‪ 30-20‬دقيقة على درجة حرارة الغرفة ثم تغمس اإلبرة‬
‫البكتيرية من المعلق وتخطط على البيئة الصلبة المناسبة وتكرر في عدة‬
‫أطباق ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫من الضرورى جدًا أن يكون سطح البيئة جاف واال فإن البكتيريا ستسبح‬
‫على السطح المبلل وتتكون نموات ممتزجة وال يمكن الحصول على‬
‫مستعمرات فردية ‪ .‬ولتنفيذ ذلك تبرد البيئة إلى ‪ 45‬درجة مئوية قبل صبها‬
‫وتترك األطباق المصبوبة علي درجـة حـرارة الغـرفة لمدة ‪ 48-24‬ساعة ‪.‬‬
‫ويمكـن اختصـار الوقت إذا مـا تـرك الطبـق مفتـوحًا فـى ‪(Laminar‬‬
‫‪Flow Apparatus) Biological Safty Cabinet‬‬
‫لمدة ‪ 15‬دقيقة مع ملحظة أن يكون الفلتر الخاص بالتهوية صالح‬
‫للستعمال ‪.‬‬
‫بعد التخطيط تحضن األطباق على درجة حرارة ‪530-25‬م لكل المسببات‬
‫‪Clavibacterium‬‬
‫البكتيريا‬
‫باستثناء‬
‫البكتيرية‬
‫)‪ (Corynebacterium‬ألن درجة الحرارة المثلى لنموها تتراوح‬
‫بين ‪525-23‬م ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يجب متابعة فحص األطباق يوميًا للكشف عن ظهور المستعمرات ‪.‬‬
‫هناك اختلفات واضحة فى معدل نمو البكتيريا المختلفة الموجودة على‬
‫لا أن‬
‫النبات والتى يمكن استخدامها كمرشد عند التشخيص ‪ .‬فمعروف مث ً‬
‫معظم البكتيريا الرمية تنمو بدرجة أسرع من الممرضة ‪ .‬وفى معظم الحاالت‬
‫نجد أن الرميات تنتج مستعمرات ميكروسكوبية بعد ‪ 36-24‬ساعة على‬
‫درجة حرارة ‪528-25‬م وبالتالى يجب استبعادها ‪.‬‬

‫ل معظم الـ‬
‫يوجد بين األجناس اختلفات فى معدل النمو فمث اً‬
‫‪ Pseudomonas, Xanthomonas,‬تنتج مستعمرات‬
‫ميكروسكوبية خلل ‪ 72-36‬ساعة من التحضين على الدرجة المثلى‬
‫لنموها ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يلحظ أنه إذا كانت العينات المعزول منها عينات طازجة وحالتها جيدة فإن‬
‫نتيجة التخطيط على البيئات الصلبة هو ظهور المستعمرات سائدة فى‬
‫الطبق دون تلوث بالرميات ‪.‬‬
‫البكتيريا الرمية ‪ Erwinia herbicola‬تعطى نمو رقيق لزج أصفر‬
‫اللون ذو صبغة غير منتشرة وهذه تحتاج إلى خبرة خاصة لتميزها عن‬
‫البكتيريا ‪ Xanthomonas‬حيث يقع الكثيرين فى خطأ التفريق‬
‫بينهما ‪.‬‬
‫إذا تركت األجزاء النباتية مبللة عقب جمعها فإنها ستحمل العديد من‬
‫البكتيريا الرمية التى تفوق سرعة نموها البكتيريا الممرضة وفى هذه الحالة‬
‫يحتاج العزل إلى بيئات شبه اختيارية أو تحضير سلسلة من التخفيفات‬
‫العالية ‪ ،‬وذلك عند إجراء عمليات التخطيط على البيئات الصلبة فالمعلق‬
‫المعتم ‪ Opaque‬يمكن تخفيفه بنسبة ‪1000 : 1 ، 100 : 1‬‬
‫باستخدام كمية من بيئة سائلة معقمة‪ .‬ويمكن ببساطة ملئ الـحلقة‬
‫‪ Loop‬الخاص باإلبرة (ومعروف أن قطرها حوالى ‪4 -3‬مم) ثم يلقح به‬
‫البيئة السائلة ‪.‬‬

‫‪ 2-3-2‬طريقة عزل أخرى‬
‫وهى طريقة اقتصادية ويستخدم فيها أدوات زجاجية معقمة مثل المستخدمة‬
‫فى عزل الفطريات كاآلتى ‪:‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫يوضع جزء صغير من النسيج النباتى المصاب قرب حافة الطبق المحتوي‬
‫علي بيئة صلبة ثم يوضع علي هذا النسيج قطرة من ماء معقم ويترك لمدة‬
‫‪ 20-15‬دقيقة ‪.‬‬

‫يخطط هذا المعلق مباشرة فى الطبق والهدف من ترك العينة لهذه المدة هو‬
‫السماح للبكتيريا بالخروج من النسيج المصاب إلى الماء وتحررها ‪.‬‬
‫يمكن رفع كفاءة هذه الطريقة بالضغط على النسيج النباتى بإبرة معقمة ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫التعقيم السطحى بالمطهرات غير مطلوب فى عزل البكتيريا إال فى حاالت‬
‫نادرة وأيضًا فى حالة ما إذا كان السطح طارد للماء كما فى حالة أوراق‬
‫قصب السكر‪.‬أما السبب فى عدم التعقيم هو أن المواد الداخلة فى التعقيم‬
‫تمتص بسرعة فائقة فى األنسجة النباتية وتقتل البكتيريا الموجودة بها ‪.‬‬
‫أهم المواد المستخدمة فى التعقيم هى هيبوكلوريت الصوديوم ويستخدم‬
‫بنسبة ‪ %0.5‬لمدة دقيقتين ثم الشطف بالماء المعقم عدة مرات ‪.‬‬

‫وعمومًا فإن األفضل هو غسل األجزاء النباتية بالماء الجارى عدة م ارت ثم‬
‫المعقم وذلك قبل إجراء تقطيع للنسيج ‪.‬‬

‫‪ 3-3-2‬طريقةًالعزلًبـً‪Needle Puncture Method‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نفذها ‪ Goth, 1965‬وذلك لعزل البكتيريا من الفاصوليا وتستخدم اآلن‬
‫على نطاق واسع فى محاصيل أخرى وتتم كاآلتى ‪:‬‬
‫للعزل من القرون المصابة تغمس إبرة مدببة معقمة فى مكان اإلصابة ثم‬
‫يعاد غمسها فى بيئة اآلجار ويوضع قطرة ماء معقم فى مكان الثقب ثم تفرد‬
‫بإبرة البكتيريا ‪.‬‬
‫فى تبقعات األوراق توضع العينة المغسولة سطحيا على سطح اآلجار ثم‬
‫تغمس اإلبرة المدببة المعقمة فى مكان البقعة ثم ترفع العينة ويوضع قطرة‬
‫ماء معقم عليها وتفرد بإبرة البكتيريا ‪.‬‬

‫‪ 4-3-2‬البيئات االختيارية‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫تعتبر عملية العزل من التربة أو من األجزاء النباتية المتحللة عملية صعبة‬
‫نظ ًار لوجود خليط من المترممات والمتطفلت واألولى أسرع فى نموها وقد‬
‫تخلق ظروف بيئية غير ملئمة لنمو البكتيريا الممرضة وذلك من خلل‬
‫التنافس على الغذاء أو خلق ‪ pH‬غير مناسب أو إنتاج مضادات حيوية‬
‫‪ ...‬الخ ‪.‬‬

‫ولحل هذه المشكلة نلجأ إلى البيئات المسماة مجا ًزا اختيارية وهى فى الواقع‬
‫شبه اختياريـة وهذه تقلل من نمو المترممات بينما تنمو المتطفلت ‪ .‬والفكرة‬
‫منها هى تنشيط ظهور األعداد القليلة من المسببات المرضية المخلوطة‬
‫بأعداد كبيرة من الكائنات األخرى الموجودة فى التربة‬

‫وهناكًعدةًثغراتًفىًاستخدامًهذهًالبيئات‬
‫‪ 1‬ـًمعقدةً‪ -‬مرتفعةًالتكاليفً– صعبةًالتحضير ‪.‬‬

‫‪ 2‬ـ قد تعطى نتائج غير حقيقية عن تعداد البكتيريا المعزولة وذلك لوجود المواد‬
‫المثبطة فى البيئة ‪.‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫إال أنها ذات فوائد عديدة خاصة فى حالة الدراسات الكمية لحياة البكتيريا‬
‫الممرضة والرمية فى منطقة الريزوسفير ‪ Rhizosphere‬وفى‬
‫منطقة الـ ‪ Phyllosphere‬وأيضًا على البذور واألجزاء النباتية ‪.‬‬
‫أيضاًمهمةًفىًدورةًالعدوىًحيثًيمكنًالتعرفًعلىًالدورةًخاصة فىً‬
‫وجودًمصادرًعدوىًفىًالحقل ‪.‬‬
‫وتعتمد هذه البيئات على التحكم في مصادر الكربون في البيئات المختلفة‬
‫ذات التركيب المعقد ‪.‬‬
‫وأيضًا فى التداخل ‪ Inclusion‬للصبغات والمضادات الحيوية أو‬
‫المضادات الحيوية المحببة للمسبب ‪.‬‬

‫‪ 4-2‬اختباراتًالعدوى‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫هى الخطوة التالية بعد العزل وذلك استكماال الشتراطات كوخ إلثبات القدرة‬
‫المرضية ‪.‬‬
‫ال تعتبر الطرق الخاصة بتلقيح الثمار أو شرائح األنسجة النباتية اختبارات‬
‫عدوى بالرغم من دورها الهام فى التشخيص والمساعدة على فصل البكتيريا‬
‫الممرضة عن المترممة ‪.‬‬

‫اختباراتًالعدويًالشائعة‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫فرطًالحساسيةًفىًأوراقًالدخانً ‪Hypersensitive‬‬
‫‪. Reaction‬‬
‫تلقيحًقرونًالفاصولياً"الختبارًأمراضًالفاصوليا ” ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫الحقنً‪. Infiltration Technique‬‬

‫‪‬‬

‫الرشً‪. Atomization‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيحًالسيقانًوالجذور ‪.‬‬

‫‪‬‬

‫تلقيح شرائــح البطاطس وهــى طـريقة مفيــدة فى التعـرف على البكتيريا‬
‫التـابعة لـ‪ Erwinia carotovora‬مع ملحظة أن هذه ليست‬
‫طريقة عدوى ولكنها مجرد اختبار ‪.‬‬